<pre id="a17ea"></pre>

  1. 岛国av在线播放观看,A毛片终身免费观看网站,粗大挺进尤物人妻一区二区,国产成人综合久久久久久,亚洲欧美成人一区二区三区,丰满少妇爆乳无码专区,一本色道久久88亚洲综合,天堂а√中文在线官网
    技術(shù)文章您的位置:網(wǎng)站首頁 >技術(shù)文章 >New Phytol(IF=8.1)▏DAP-seq技術(shù)助力揭示水稻免疫調(diào)控分子機(jī)制

    New Phytol(IF=8.1)▏DAP-seq技術(shù)助力揭示水稻免疫調(diào)控分子機(jī)制

    更新時(shí)間:2026-05-11   點(diǎn)擊次數(shù):119次

    WPS圖片(1).png

    文獻(xiàn)題目:ONAC122 and ONAC131, controlled by OsSRWD1, OsRACK1A, and OsRGLG2, regulate rice immunity through modulating OsRFPH2-2 and OsBIERF3

    發(fā)表期刊:New Phytologist

    影響因子:8.1

    物種:水稻

    作者單位:浙江大學(xué)

    發(fā)表時(shí)間:2026年2月24日

    藍(lán)景科信提供:DAP-seq技術(shù)服務(wù)

    主要研究結(jié)果

    植物先天免疫系統(tǒng)是其抵御病原菌侵染的核心防線,主要包括病原/微生物/損傷相關(guān)分子模式觸發(fā)的免疫(PTI)和效應(yīng)因子觸發(fā)的免疫(ETI)兩大層面。二者通過啟動(dòng)復(fù)雜的信號(hào)級(jí)聯(lián)反應(yīng),激活NAC、WRKY、ERF等多個(gè)家族的轉(zhuǎn)錄因子(TFs),驅(qū)動(dòng)免疫相關(guān)基因的轉(zhuǎn)錄重編程,最終實(shí)現(xiàn)對(duì)病原菌的抗性響應(yīng)。稻瘟病由稻瘟病菌(Magnaporthe oryzae)引起,是水稻生產(chǎn)中破壞性的真菌病害之一,嚴(yán)重威脅全球糧食安全。解析水稻抗稻瘟病的分子調(diào)控網(wǎng)絡(luò),挖掘關(guān)鍵抗病基因,是培育抗病水稻品種的核心基礎(chǔ)。

    NAC轉(zhuǎn)錄因子是植物的核心轉(zhuǎn)錄因子家族,其N端為保守DNA結(jié)合域,C端為轉(zhuǎn)錄調(diào)控可變域,在生長發(fā)育與逆境應(yīng)答中至關(guān)重要。水稻151個(gè)NAC成員中已有21個(gè)被證實(shí)參與免疫調(diào)控,其中ONAC122和ONAC131可正向調(diào)控稻瘟病抗性,但其作用機(jī)制、靶基因、上游調(diào)控及結(jié)合元件等關(guān)鍵科學(xué)問題仍未闡明。

    該研究利用RNA-seq比較onac122onac131突變體、過表達(dá)株系與野生型的轉(zhuǎn)錄組差異,GO與KEGG富集分析表明,相關(guān)差異表達(dá)基因主要富集在植物-病原菌互作、MAPK 信號(hào)通路等免疫相關(guān)通路。進(jìn)一步通過DAP-seq鑒定ONAC122全基因組結(jié)合位點(diǎn),其中24.6%富集于基因啟動(dòng)子區(qū)且其核心結(jié)合順式作用元件為經(jīng)典的CACG,同時(shí)鑒定出其可結(jié)合的新型ACTC元件。隨后通過酵母雙雜交、雙分子熒光互補(bǔ)及免疫共沉淀實(shí)驗(yàn)證實(shí),ONAC122與ONAC131可形成同源及異源二聚體,ONAC131不直接激活靶基因,但可協(xié)同增強(qiáng)ONAC122對(duì)OsRFPH2-2OsBIERF3的轉(zhuǎn)錄激活。而OsSRWD1和OsRACK1A作為互作蛋白,特異性增強(qiáng)ONAC122的轉(zhuǎn)錄活性,正向調(diào)控該模塊的免疫功能;而具有E3泛素連接酶活性的OsRGLG2,則通過泛素化修飾并經(jīng)26S蛋白酶體途徑降解ONAC122和ONAC131,抑制其功能,進(jìn)而負(fù)調(diào)控水稻對(duì)稻瘟病的抗性。

    該研究不僅為水稻抗稻瘟病的分子機(jī)制研究奠定了重要基礎(chǔ),也為植物先天免疫系統(tǒng)的調(diào)控研究提供了新的視角,其研究成果兼具理論價(jià)值和應(yīng)用價(jià)值,對(duì)保障水稻生產(chǎn)安全、推動(dòng)植物抗病分子育種發(fā)展具有重要意義。


    圖1.png

     

    圖1. ONAC122和ONAC131在水稻稻瘟病抗性及幾丁質(zhì)觸發(fā)的病原相關(guān)分子模式誘導(dǎo)免疫(PTI)中的正調(diào)控作用。(a~f)ONAC122(a~c)和ONAC131(d~f)正向調(diào)控水稻的稻瘟病抗性。采用打孔接種法,向onac122突變體、ONAC122過表達(dá)株系、onac131突變體、ONAC131過表達(dá)株系及ZH11的代表性葉片接種10 uL稻瘟病菌RB22菌株的孢子懸浮液(濃度為5×10?個(gè)?mL-1)后,觀察葉片的病害癥狀(a、d)、測定病斑長度(b、e)并檢測稻瘟病菌在植株體內(nèi)的相對(duì)生物量(c、f)。在接種后第5天記錄病害表型并采集葉片樣品(比例尺=0.2 cm)。采用熒光定量PCR法對(duì)病菌相對(duì)生物量進(jìn)行定量分析,以稻瘟病菌MoPot2基因的表達(dá)量相對(duì)于水稻泛素基因OsUbi的表達(dá)量的倍數(shù)表示。圖b、c、e、f中數(shù)據(jù)以平均值±標(biāo)準(zhǔn)誤表示,其中b、e的樣本量n=27,c、f的樣本量n=9。(g、h)幾丁質(zhì)處理后,onac122突變體、ONAC122過表達(dá)株系(g)以及onac131突變體、ONAC131過表達(dá)株系(h)中的活性氧(ROS)爆發(fā)情況。(i、j)幾丁質(zhì)處理后,onac122突變體、ONAC122過表達(dá)株系(i)以及onac131突變體、ONAC131過表達(dá)株系(j)和ZH11植株中OsWRKY45基因的表達(dá)變化。將水稻葉圓片在水中過夜預(yù)培養(yǎng)后,用濃度為100ug?mL-1的幾丁質(zhì)處理,以清水處理作為陰性對(duì)照;立即檢測化學(xué)發(fā)光信號(hào),以相對(duì)光單位(RLU)表示檢測結(jié)果(g、h)。在處理后指定時(shí)間點(diǎn)采集葉片樣品,進(jìn)行基因表達(dá)分析,以水稻18SrRNA基因?yàn)閮?nèi)參對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行標(biāo)準(zhǔn)化處理(i、j)。圖g、h中數(shù)據(jù)以平均值±標(biāo)準(zhǔn)誤表示,樣本量n=3;圖i、j中樣本量n=9。注:b、c、e、f中**表示與ZH11相比,差異極顯著(P<0.01,Student's t檢驗(yàn));i、j中不同字母表示組間差異顯著(P<0.05,單因素方差分析)。所有實(shí)驗(yàn)均獨(dú)立重復(fù)3次,結(jié)果一致。


    圖2.png

     

    圖2. 轉(zhuǎn)錄組測序分析水稻onac122突變體、ONAC122過表達(dá)株系、onac131突變體及ONAC131過表達(dá)株系中的差異表達(dá)基因。(a)韋恩圖展示未接稻瘟病菌時(shí),與ZH11相比,在onac122和onac131突變體中下調(diào)、且在ONAC122和ONAC131過表達(dá)株系中上調(diào)的差異表達(dá)基因分布情況。(b、c)與ZH11相比,ONAC122和ONAC131過表達(dá)株系中上調(diào)基因(b)、onac122和onac131突變體中下調(diào)基因(c)的GO功能富集分析結(jié)果。(d、e)與ZH11相比,ONAC122和ONAC131過表達(dá)株系(d)、onac122和onac131突變體(e)中免疫相關(guān)基因的表達(dá)變化。(f、g)經(jīng)稻瘟病菌接種或未接種處理后,onac122突變體、ONAC122過表達(dá)株系(f),以及onac131突變體、ONAC131過表達(dá)株系(g)和ZH11中篩選出的免疫相關(guān)基因的表達(dá)模式。對(duì)三周齡水稻植株采用葉面噴霧法接種稻瘟病菌RB22菌株的孢子懸浮液(濃度為2×10?個(gè)?mL-1),并以0.05%的吐溫-20噴霧處理作為空白對(duì)照;在接種后指定時(shí)間點(diǎn)采集葉片樣品進(jìn)行基因表達(dá)分析,以水稻18SrRNA基因?yàn)閮?nèi)參對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行標(biāo)準(zhǔn)化處理。圖f、g中數(shù)據(jù)以平均值±標(biāo)準(zhǔn)誤表示,樣本量n=3;不同字母表示組間差異達(dá)到顯著水平(P<0.05,單因素方差分析)。所有實(shí)驗(yàn)均獨(dú)立重復(fù)3次,實(shí)驗(yàn)結(jié)果一致。


    圖3.png

     

    圖3. 水稻ONAC122的全基因組結(jié)合位點(diǎn)及ONAC122、ONAC131對(duì)CACG和ACTC順式作用元件的結(jié)合活性。(a)經(jīng)DAP-seq分析得到的兩個(gè)生物學(xué)重復(fù)中,ONAC122高可信度結(jié)合峰的統(tǒng)計(jì)結(jié)果。(b)DAP-seq分析鑒定的ONAC122結(jié)合峰在基因區(qū)域及染色體其他區(qū)域的分布情況。(c)兩個(gè)生物學(xué)重復(fù)的DAP-seq分析中,ONAC122在基因啟動(dòng)子區(qū)的高可信度結(jié)合峰統(tǒng)計(jì)結(jié)果。(d、e)被鑒定為ONAC122結(jié)合序列的CACG元件(d)和ACTC元件(e)。(f~i)電泳遷移率變動(dòng)實(shí)驗(yàn)(EMSA)中,ONAC122、ONAC131對(duì)CACG元件(f、g)、ACTC元件(h、i)及其突變體的結(jié)合活性。將Bio標(biāo)記的探針,與GST-ONAC122蛋白、GST-ONAC131蛋白或純化的GST蛋白(作為陰性對(duì)照)共孵育,設(shè)置添加或不添加過量(20倍)非標(biāo)記探針的實(shí)驗(yàn)組。特異性DNA-蛋白復(fù)合物與游離探針均用黑色箭頭標(biāo)注。(j)酵母單雜交實(shí)驗(yàn)(Y1H)中,ONAC122、ONAC131對(duì)CACG順式作用元件的結(jié)合活性。將轉(zhuǎn)入指定Rec2載體與pHis2載體組合的酵母細(xì)胞,經(jīng)梯度稀釋后,分別培養(yǎng)在SD/缺Trp/缺Leu、SD/缺Trp/缺Leu/缺His+30mmol/L3-氨基-1,2,4-三唑(3-AT)、SD/缺Trp/缺Leu/缺His+50mmol/L3-AT培養(yǎng)基上。(k)ACTC識(shí)別序列無法與CACG識(shí)別序列競爭結(jié)合ONAC122。將Bio標(biāo)記的3×CACG探針,與GST-ONAC122蛋白或純化的GST蛋白(作為陰性對(duì)照)共孵育,設(shè)置添加或不添加過量(20倍)非標(biāo)記3×ACTC探針的實(shí)驗(yàn)組。特異性DNA-蛋白復(fù)合物與游離探針均用黑色箭頭標(biāo)注。所有實(shí)驗(yàn)均獨(dú)立重復(fù)3次,實(shí)驗(yàn)結(jié)果一致。


    圖4.png

     

    圖4. 水稻ONAC122對(duì)OsRFPH2-2和OsBIERF3啟動(dòng)子的結(jié)合活性及其對(duì)二者的轉(zhuǎn)錄激活作用。(a) 稻瘟病菌接種與未接種條件下,onac122突變體和ONAC122過表達(dá)株系中OsRLCK107、OsRFPH2-2和OsBIERF3 基因的相對(duì)表達(dá)量。對(duì)三周齡水稻植株采用葉面噴霧法,接種稻瘟病菌RB22菌株的孢子懸浮液(濃度為2×10?個(gè)?mL-1),并以0.05%吐溫-20噴霧處理作為空白對(duì)照;在接種后指定時(shí)間點(diǎn)采集葉片樣品進(jìn)行基因表達(dá)分析,以水稻18SrRNA基因?yàn)閮?nèi)參完成數(shù)據(jù)標(biāo)準(zhǔn)化。實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)以平均值±標(biāo)準(zhǔn)誤表示,樣本量n=9。(b、c)電泳遷移率變動(dòng)實(shí)驗(yàn)驗(yàn)證ONAC122與OsRFPH2-2啟動(dòng)子S2位點(diǎn)(b)、OsBIERF3啟動(dòng)子S2/S3位點(diǎn)(c)中CACG順式作用元件的結(jié)合作用。圖中CACG元件以紅色字體標(biāo)注并添加下劃線,(+)表示正鏈,(-)表示負(fù)鏈。將含CACG順式作用元件的30bp片段及其突變體片段進(jìn)行Bio標(biāo)記,與GST-ONAC122蛋白共孵育,同時(shí)設(shè)置添加/不添加20倍過量非標(biāo)記探針的實(shí)驗(yàn)組,以純化的GST蛋白作為陰性對(duì)照。特異性DNA-蛋白復(fù)合物與游離探針均用黑色箭頭標(biāo)注。(d)經(jīng)DAP-seq鑒定的OsRFPH2-2和OsBIERF3啟動(dòng)子中潛在的CACG順式作用元件位點(diǎn)。其中P1和P2為ChIP-PCR所用探針,S1、S2、S3為啟動(dòng)子區(qū)域的CACG順式作用元件位點(diǎn)。(e)ChIP-PCR實(shí)驗(yàn)驗(yàn)證ONAC122在體內(nèi)與OsRFPH2-2和OsBIERF3啟動(dòng)子片段的結(jié)合作用。提取ONAC122-GFP融合蛋白表達(dá)株系的染色質(zhì)片段化DNA,與GFP抗體(α-GFP)共孵育,以免疫前血清(Pre)作為陰性對(duì)照;將免疫沉淀(IP)樣品、免疫沉淀前的染色質(zhì)DNA(陽性對(duì)照/輸入樣品)用于PCR擴(kuò)增檢測。(f)雙熒光素酶報(bào)告基因?qū)嶒?yàn)中所用的ONAC122、ONAC131效應(yīng)載體及靶基因啟動(dòng)子報(bào)告載體示意圖。(g、h)本氏煙草葉片中瞬時(shí)共表達(dá)ONAC122和/或ONAC131與OsRFPH2-2(g)、OsBIERF3(h)啟動(dòng)子后的相對(duì)熒光素酶/海腎熒光素酶(LUC/Ren)活性值。實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)以平均值±標(biāo)準(zhǔn)誤表示,樣本量n=6。(i)ONAC131可提高ONAC122對(duì)含CACG元件的OsRFPH2-2和OsBIERF3啟動(dòng)子片段的結(jié)合親和力。將Bio標(biāo)記的探針與重組GST-ONAC122蛋白單獨(dú)孵育,或與GST-ONAC122和GST-ONAC131蛋白共同孵育;特異性DNA-蛋白復(fù)合物與游離探針用黑色箭頭標(biāo)注,蛋白相對(duì)表達(dá)量采用IMAGEJ軟件進(jìn)行定量分析。注:a、g、h中不同字母表示組間差異達(dá)到顯著水平(P<0.05,單因素方差分析);所有實(shí)驗(yàn)均至少獨(dú)立重復(fù)3次,結(jié)果一致。


    圖5.png

     

    圖5. OsRFPH2-2 在水稻稻瘟病抗性及幾丁質(zhì)觸發(fā)的模式觸發(fā)免疫(PTI)中的正調(diào)控作用。(a)OsRFPH2-2的E3泛素連接酶活性檢測。將GST融合OsRFPH2-2蛋白與人類E1、E2泛素結(jié)合酶及FLAG標(biāo)簽泛素在30℃條件下共孵育3小時(shí),采用抗GST抗體和抗FLAG抗體分別檢測蛋白泛素化修飾水平與蛋白表達(dá)量。(b~d)OsRFPH2-2基因敲除突變體的稻瘟病抗性顯著降低。采用打孔接種法,向代表性的osrfph2-2突變體和ZH11葉片接種10 uL稻瘟病菌RB22菌株的孢子懸浮液(濃度為5×10?個(gè)?mL-1),觀察葉片的病害癥狀(b)、測定病斑長度(c)并檢測病菌在植株體內(nèi)的相對(duì)生物量(d)。在接種后第5天記錄病害表型并采集葉片樣品,比例尺為0.2 cm。采用熒光定量PCR法檢測病菌相對(duì)生物量,以稻瘟病菌MoPot2基因表達(dá)量相對(duì)于水稻泛素基因OsUbi的倍數(shù)表示。實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)以平均值±標(biāo)準(zhǔn)誤表示,其中c的樣本量n=27,d的樣本量n=9。(e)稻瘟病菌接種與未接種條件下,osrfph2-2突變體和ZH11中抗病相關(guān)基因的表達(dá)變化。對(duì)三周齡水稻植株采用葉面噴霧法接種稻瘟病菌RB22菌株的孢子懸浮液(濃度為2×10?個(gè)?mL-1),并以等體積0.05%吐溫-20溶液噴霧處理作為陰性對(duì)照;在接種后48小時(shí)采集葉片樣品進(jìn)行基因表達(dá)分析,以水稻18SrRNA基因?yàn)閮?nèi)參完成數(shù)據(jù)標(biāo)準(zhǔn)化。實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)以平均值±標(biāo)準(zhǔn)誤表示,樣本量n=9。(f、g)osrfph2-2突變體和ZH11中幾丁質(zhì)觸發(fā)的活性氧(ROS)爆發(fā)情況(f)及OsWRKY45基因的表達(dá)變化(g)。將水稻葉圓片在清水中過夜預(yù)培養(yǎng)后,用濃度為100 ug?mL-1的幾丁質(zhì)處理,以清水處理作為陰性對(duì)照;立即檢測化學(xué)發(fā)光信號(hào),結(jié)果以相對(duì)光單位(RLU)表示(f)。在處理后指定時(shí)間點(diǎn)采集葉片樣品進(jìn)行基因表達(dá)分析,以水稻18SrRNA基因?yàn)閮?nèi)參完成數(shù)據(jù)標(biāo)準(zhǔn)化(g)。實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)以平均值±標(biāo)準(zhǔn)誤表示,其中f的樣本量n=3,g的樣本量n=9。注:c、d中**表示與ZH11相比差異極顯著(P<0.01,Student's t檢驗(yàn));e、g中不同字母表示組間差異顯著(P<0.05,單因素方差分析)。所有實(shí)驗(yàn)均至少獨(dú)立重復(fù)3次,結(jié)果一致。

    圖6.png

     

    圖6. 水稻 ONAC122、ONAC131 與 OsSRWD1、OsRACK1A 及 OsRGLG2 的蛋白互作關(guān)系。(a)酵母雙雜交(Y2H)實(shí)驗(yàn)驗(yàn)證ONAC122、ONAC131與OsSRWD1、OsRACK1A、OsRGLG2的互作。將含有指定重組pGBKT7載體與pGADT7載體組合的酵母菌株,分別培養(yǎng)在SD/缺Trp/缺Leu培養(yǎng)基或SD/缺Trp/缺Leu/缺His/缺腺嘌呤/5-溴-4-氯-3-吲哚-β-D-半乳糖苷(X-α-gal)/金擔(dān)子素A(AbA)培養(yǎng)基上,根據(jù)酵母菌落的生長情況判斷蛋白間是否存在互作。(b)免疫共沉淀(Co-IP)實(shí)驗(yàn)驗(yàn)證ONAC122、ONAC131與OsSRWD1、OsRACK1A、OsRGLG2的互作。將攜帶重組pCAMBIA1300-GFP載體、pFGC1008-HA載體或空pCAMBIA1300-GFP載體的農(nóng)桿菌,按指定組合共浸潤至本氏煙草葉片中;浸潤后48小時(shí)提取總蛋白,用GFP親和磁珠進(jìn)行3小時(shí)免疫沉淀,隨后分別采用抗GFP抗體和抗HA抗體進(jìn)行免疫印跡檢測,目標(biāo)蛋白用紅色星號(hào)標(biāo)注。(c)雙分子熒光互補(bǔ)(BiFC)實(shí)驗(yàn)驗(yàn)證ONAC122、ONAC131與OsSRWD1、OsRACK1A、OsRGLG2的互作。將攜帶重組或空p2YN載體與p2YC載體的農(nóng)桿菌,分別共浸潤至表達(dá)核定位標(biāo)記蛋白R(shí)FP-H2B的本氏煙草葉片中;浸潤后48小時(shí)觀察熒光信號(hào),比例尺為20 um。所有實(shí)驗(yàn)均獨(dú)立重復(fù)3次,結(jié)果一致。


    圖7.png

     

    圖7. OsSRWD1、OsRACK1A及OsRGLG2對(duì)ONAC122轉(zhuǎn)錄活性的影響,以及 OsRGLG2 在水稻稻瘟病抗性和幾丁質(zhì)觸發(fā)的模式觸發(fā)免疫(PTI)中的負(fù)調(diào)控作用。(a~c)在OsRFPH2-2啟動(dòng)子存在的條件下,本氏煙草葉片中瞬時(shí)共表達(dá)ONAC122、ONAC131與OsSRWD1(a)、OsRACK1A(b)或OsRGLG2(c)后的相對(duì)熒光素酶/海腎熒光素酶(LUC/Ren)活性值。實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)以平均值±標(biāo)準(zhǔn)誤表示,樣本量n=6。(d~f)OsRGLG2基因敲除突變體(osrglg2)的稻瘟病抗性顯著增強(qiáng)。采用打孔接種法,向代表性的osrglg2突變體和ZH11葉片接種10 uL稻瘟病菌RB22菌株的孢子懸浮液(濃度為5×10?個(gè)?mL-1),觀察葉片的病害癥狀(d)、測定病斑長度(e)并檢測病菌在植株體內(nèi)的相對(duì)生物量(f)。在接種后第5天記錄病害表型并采集葉片樣品,比例尺為0.2 cm。采用熒光定量PCR法檢測病菌相對(duì)生物量,以稻瘟病菌MoPot2基因表達(dá)量相對(duì)于水稻泛素基因OsUbi的倍數(shù)表示。實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)以平均值±標(biāo)準(zhǔn)誤表示,其中e的樣本量n=27,f的樣本量n=9。(g)稻瘟病菌接種與未接種條件下,osrglg2突變體和ZH11中OsPBZ1基因的表達(dá)變化。對(duì)三周齡水稻植株采用葉面噴霧法接種稻瘟病菌RB22菌株的孢子懸浮液(濃度為2×10?個(gè)?mL-1),并以等體積0.05%吐溫-20噴霧處理作為陰性對(duì)照;在接種后48小時(shí)采集葉片樣品進(jìn)行基因表達(dá)分析,以水稻18SrRNA基因?yàn)閮?nèi)參完成數(shù)據(jù)標(biāo)準(zhǔn)化。實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)以平均值±標(biāo)準(zhǔn)誤表示,樣本量n=9。(h、i)osrglg2突變體和ZH11中幾丁質(zhì)觸發(fā)的活性氧(ROS)爆發(fā)情況(h)及OsWRKY45基因的表達(dá)變化(i)。將水稻葉圓片在清水中過夜預(yù)培養(yǎng)后,用濃度為100 μg?mL-1的幾丁質(zhì)處理,以清水處理作為陰性對(duì)照;立即檢測化學(xué)發(fā)光信號(hào),結(jié)果以相對(duì)光單位(RLU)表示(h)。在處理后指定時(shí)間點(diǎn)采集葉片樣品進(jìn)行基因表達(dá)分析,以水稻18SrRNA基因?yàn)閮?nèi)參完成數(shù)據(jù)標(biāo)準(zhǔn)化(i)。實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)以平均值±標(biāo)準(zhǔn)誤表示,其中h的樣本量n=3,i的樣本量n=9。注:a~c、g、i中不同字母表示組間差異顯著(P<0.05,單因素方差分析);e、f中**表示與ZH11相比差異極顯著(P<0.01,Student'st檢驗(yàn))。所有實(shí)驗(yàn)均獨(dú)立重復(fù)3次,結(jié)果一致。


    圖8.png

     

    圖8. 水稻中OsRGLG2介導(dǎo)的ONAC122和ONAC131泛素化修飾與降解。(a)OsRGLG2的E3泛素連接酶活性及體外對(duì)ONAC122、ONAC131的泛素化修飾。將OsRGLG2-HIS與GST-ONAC122或GST-ONAC131,在人類E1、E2泛素結(jié)合酶及FLAG標(biāo)簽泛素存在的條件下,于30℃共孵育3小時(shí)。采用抗HIS抗體、抗GST抗體及抗FLAG抗體分別檢測蛋白泛素化修飾水平與蛋白表達(dá)量。(b)本氏煙草葉片中OsRGLG2對(duì)ONAC122、ONAC131的泛素化修飾。將攜帶指定重組載體(pCAMBIA1300-OsRGLG2-GFP、pFGC1008-ONAC122-HA、pFGC1008-ONAC131-HA)或空載體(pCAMBIA1300-GFP、pFGC1008-HA)的農(nóng)桿菌共浸潤至本氏煙草葉片;浸潤后48小時(shí)提取總蛋白,用GFP親和磁珠免疫沉淀3小時(shí),隨后采用抗HA抗體、抗GFP抗體及抗泛素抗體進(jìn)行免疫印跡檢測。(c、d)無細(xì)胞降解實(shí)驗(yàn)驗(yàn)證OsRGLG2介導(dǎo)的GST-ONAC122(c)和GST-ONAC131(d)降解。將GST-ONAC122、GST-ONAC131分別與OsRGLG2基因敲除突變體(osrglg2)和ZH11的總蛋白提取物共孵育,設(shè)置添加或不添加50μM蛋白酶體抑制劑MG132的實(shí)驗(yàn)組,通過抗GST抗體免疫印跡檢測目標(biāo)蛋白的降解情況。(e、f)本氏煙草葉片中OsRGLG2介導(dǎo)的ONAC122(e)和ONAC131(f)降解。將攜帶指定重組載體(pCAMBIA1300-OsRGLG2-GFP、pFGC1008-ONAC122-HA、pFGC1008-ONAC131-HA)的農(nóng)桿菌共浸潤至本氏煙草葉片,在浸潤后24小時(shí)添加或不添加50μMMG132;提取總蛋白后,采用抗GFP抗體、抗HA抗體及抗Actin抗體進(jìn)行免疫印跡檢測。所有實(shí)驗(yàn)均獨(dú)立重復(fù)3次,結(jié)果一致。

    圖9.png

     

    圖9. osrglg2 onac122 雙突變體稻瘟病抗性減弱及OsRGLG2-ONAC122/131-OsRFPH2-2調(diào)控水稻免疫的模式圖。(a~c)osrglg2onac122雙突變體的稻瘟病抗性顯著減弱。采用打孔接種法,向代表性的onac122單突變體、osrglg2單突變體、osrglg2onac122雙突變體及ZH11葉片接種10uL稻瘟病菌RB22菌株的孢子懸浮液(濃度為5×10?個(gè)?mL-1),觀察葉片的病害癥狀(a)、測定病斑長度(b)并檢測病菌在植株體內(nèi)的相對(duì)生物量(c)。在接種后第5天記錄病害表型并采集葉片樣品,比例尺為0.2厘米。采用熒光定量PCR法檢測病菌相對(duì)生物量,以稻瘟病菌MoPot2基因表達(dá)量相對(duì)于水稻泛素基因OsUbi的倍數(shù)表示。實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)以平均值±標(biāo)準(zhǔn)誤表示,其中b的樣本量n=27,c的樣本量n=9。b、c中不同字母表示組間差異顯著(P<0.05,單因素方差分析)。所有實(shí)驗(yàn)均獨(dú)立重復(fù)3次,結(jié)果一致。(d)OsRGLG2-ONAC122/131-OsRFPH2-2調(diào)控水稻免疫的模式圖。NAC轉(zhuǎn)錄因子ONAC122可通過轉(zhuǎn)錄激活下游靶基因(包括OsRFPH2-2和OsBIERF3)的表達(dá),正向調(diào)控水稻免疫;ONAC131可協(xié)同增強(qiáng)ONAC122介導(dǎo)的轉(zhuǎn)錄激活作用。ONAC122和ONAC131均能與OsSRWD1、OsRACK1A及OsRGLG2發(fā)生互作,其中OsSRWD1和OsRACK1A可增強(qiáng)ONAC122的轉(zhuǎn)錄活性,而OsRGLG2則抑制其轉(zhuǎn)錄活性。具有活性的E3泛素連接酶OsRGLG2可通過泛素化修飾ONAC122和ONAC131并促進(jìn)二者降解,進(jìn)而抑制水稻免疫。圖中“促進(jìn)作用"以箭頭表示,代表激活或上調(diào);“抑制作用"以鈍端箭頭表示,代表抑制或下調(diào)。該模式圖通過BioRender軟件繪制。

    DAP,2026.jpg


    聯(lián)


    主站蜘蛛池模板: 久久99精品国产99久久6尤物| 伊人a?v| 久久精品国产99久久6动| 国产成人综合野草| 亚州无线国产2021| 国产欧美日韩久久久久| 中国av一区二区三区| 成人影片一区免费观看| 一区二区三区国产视频| 久久精品免费视看国产成人| 精品国产乱码久久久久夜深人妻| 亚洲成av人片在www鸭子| 一本色道久久综合亚州精品蜜桃| 他掀开裙子把舌头伸进去添视频 | 亚洲综合色区在线播放2019| 国产高潮视频在线观看| 欧美777| 亚洲综合一区国产精品| 日日摸日日添日日碰| 中文毛片无遮挡播放免费| 18禁无遮挡啪啪无码网站| 99久久99精品久久久久久| 四虎影视永久免费观看| 波多野结衣av88综合| 99国产欧美久久久精品蜜芽| 婷婷97狠狠做五月深爱婷婷| 天天爽天天做天天爱| 久久久久影院美女国产主播| 亚洲成人av在线系列| 99热这里只就有精品22| 天天撸网站| 伊人88| 国模冰冰高清炮轰图150p| 国产91透明丝袜美腿在线| 精品毛片乱码1区2区3区| 精品一卡2卡三卡4卡乱码精品视频| 国产jk白丝av在线播放| 久艹在线| 97久久人人超碰国产精品| 国产精品观看视频免费完整版| 少妇极品熟妇人妻高清|